一些细胞和组织可在悬浮状态下生长，但相当一部分哺乳动物细胞需要表面贴壁。因此，用于提供细胞体外培养环境的培养瓶、培养板和培养皿除了具有良好的透明度和无毒、无菌外，还需经表面改性处理使之能够贴壁、分裂和生长。
细胞培养瓶特征
厚度均匀，底部无畸变；
密封盖/滤膜盖（0.22μm疏水膜）；
设计的瓶盖可快速旋转；
侧面可叠放，更有效地利用培养箱；
无毒，无DNA/RAN酶；
伽马射线消毒灭菌。

细胞培养瓶的分类：
培养瓶的瓶颈也有多种样式，有直颈、斜颈、角度颈、三角形、矩形。
直颈：可以减少培养基因晃动而流到瓶盖里；
斜颈：易于倾注，移液管或者细胞刮容易进入瓶体；
角度颈：移液管或者细胞刮易于进入瓶身，并且可减少培养基因晃动而流到瓶盖；
三角形：移液管或细胞刮更易达到瓶角，宽底增加稳定性；
矩形：斜颈的矩形培养瓶瓶底至瓶颈是一个坡度设计，易于倾注，移液管或者细胞刮容易进入瓶体，大部分斜颈瓶都有一个裙边以增加稳定性。直颈和角度颈的矩形培养瓶整个瓶底都是培养面，节省空间并减少培养基因晃动而流到瓶盖。

培养瓶和培养皿的区别
培养瓶适合长期培养、传代、作为种子细胞。 不易污染。
培养皿和培养板适合在各种实验中选用，临时培养。
培养面积T25约为25，T75为75。6孔板、10/孔。12孔板4/孔。
培养瓶和培养皿的区别在于，安全系数的高低、培养细胞数量的多少。个人感觉培养瓶的安全系数更高，操作也比较方便。培养瓶瓶可以用来做相对大规模的培养或比较容易被污染的细胞。而培养皿比较适合小规模的培养或做一些对照分析实验。

细胞在细胞培养瓶长成致密单层后，已基本上饱和，为使细胞能继续生长，同时也将细胞数量扩大，就必须进行传代（再培养）。传代培养也是一种将细胞保存下去的方法。同时也是利用培养细胞进行各种实验的必经过程。悬浮性细胞直接分瓶就可以，而贴壁细胞需经消化后才能分瓶。具体操作步骤如下：
将长满细胞的细胞培养瓶中原来的培养液弃去。
加入0.5—1ml 0.25％胰酶溶液，使瓶底细胞都浸入溶液中。
瓶口塞好橡皮塞，放在倒置镜下观察细胞。随着时间的推移，原贴壁的细胞逐渐趋于圆形，在还未漂起时将胰酶弃去，加入10ml培养液终止消化。观察消化也可以用肉眼，当见到瓶底发白并出现细针孔空隙时终止消化。一般室温消化时间约为1—3分钟。
用吸管将贴壁的细胞吹打成悬液，分到另外两到三瓶中，实践培养液塞好橡皮塞，置37℃下继续培养。第二天观察贴壁生长情况。
以上是细胞培养瓶在细胞传代中的应用，消化液的配制方法如下：称取0.25克胰酶蛋白酶（活力为1：250），加入100ml无Ca2+、Mg2+的Hank’s液溶解，滤器过滤除菌，4℃保存，用前可在37℃下回温。胰酶溶液中也可加入EDTA，使终浓度达0.02％。
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